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dc.contributor.advisorMoreau-Gaudry, François
dc.contributor.authorROSIER, Juliette
dc.contributor.otherArveiler, Benoît
dc.contributor.otherVerhoeyen, Els
dc.contributor.otherAmendola, Mario
dc.contributor.otherBrunet, Erika
dc.date2022-12-12
dc.date.accessioned2023-03-27T08:14:39Z
dc.date.available2023-03-27T08:14:39Z
dc.identifier.urihttp://www.theses.fr/2022BORD0259/abes
dc.identifier.uri
dc.identifier.urihttps://oskar-bordeaux.fr/handle/20.500.12278/172461
dc.identifier.nnt2022BORD0259
dc.description.abstractL’outil d’édition du génome CRISPR-Cas9 est extrêmement puissant et promet un avenir remarquable en thérapie génique. Toutefois, introduire une cassure double brin dans le génome n’est pas sans risque et peut conduire à des évènements indésirables. En effet, la survenue de modifications non-souhaitées au locus ciblé et l’apparition de sous-produits génère une génotoxicité on-target. Dans une première partie, nous nous sommes intéressés à évaluer le risque d’instabilité génomique induit par CRISPR-Cas9 dans des cellules pertinentes en clinique sur un locus d’intérêt thérapeutique. Nous avons mis en évidence une forme de génotoxicité on-target à large échelle et étudié les conséquences fonctionnelles. Dans une deuxième partie, nous avons cherché à diminuer le risque de survenue de larges réarrangements en modulant la division cellulaire. Nous avons montré que la quiescence des cellules au moment de la cassure double brin les protégeait contre l’apparition de réarrangements génomiques. Dans une dernière partie, nous nous sommes focalisés sur la génotoxicité on-target la plus fréquente, les insertions et délétions induites lors de la réparation par NHEJ quand une correction précise par HDR est souhaitée. Nous avons conçu un système d’import nucléaire de la matrice de correction HDR pour maximiser le ratio modifications précises/imprécises. L’évaluation du risque lié à l’utilisation de CRISPR-Cas9 et l’optimisation de l’outil et de ses alternatives sont cruciaux pour permettre son utilisation clinique la plus adéquate.
dc.description.abstractEnThe CRISPR-Cas9 genome editing tool is extremely powerful and promises a remarkable future in gene therapy. However, introducing a double-strand break into the genome is not without risk and can lead to adverse events. Indeed, the occurrence of undesired modifications at the targeted locus and the appearance of by-products generate the on-target genotoxicity. In a first part, we assessed the risk of genomic instability induced by CRISPR-Cas9 in clinically relevant cells on a locus of therapeutic interest. We have shown a form of large scale on-target genotoxicity and studied the functional consequences. In a second part, we aimed to reduce the risk of occurrence of large rearrangements by modulating cell division. We have demonstrated that cells in a quiescent state at the time of the double-strand break were protected from the appearance of genomic rearrangements. In a last part, we focused on the most frequent on-target genotoxicity, the NHEJ-induced insertions and deletions, when a precise correction by HDR is intended. We have designed a HDR template nuclear import system to maximize the ratio of precise/imprecise modifications. Assessing the risk linked to the use of CRISPR-Cas9 and the optimisation of the technology as well as its alternatives are crucial for safe and efficient genome editing.
dc.language.isofr
dc.subjectThérapie génique
dc.subjectÉdition génique
dc.subjectCRISPR-Cas9
dc.subjectInstabilité génomique
dc.subjectGlobine
dc.subjectPerte d’hétérozygotie copie-neutre
dc.subjectQuiescence
dc.subjectImport nucléaire de la matrice HDR
dc.subject.enGene therapy
dc.subject.enGeGenome editing CRISPR-Cas9
dc.subject.enGenomic instability
dc.subject.enGlobin
dc.subject.enCopy neutral loss-of-heterozygosity
dc.subject.enQuiescence
dc.subject.enHDR template nuclear import
dc.titleEvaluation du risque d’instabilité génomique induite par CRISPR-Cas9 et optimisation du système pour une édition plus sûre et efficace
dc.title.enCRISPR-Cas9 genomic instability risk evaluation and system optimisation for safe and efficient genome editing
dc.typeThèses de doctorat
dc.contributor.jurypresidentArveiler, Benoît
bordeaux.hal.laboratoriesBordeAux Research In Translational Oncology
bordeaux.type.institutionBordeaux
bordeaux.thesis.disciplineGénétique
bordeaux.ecole.doctoraleÉcole doctorale Sciences de la vie et de la santé (Bordeaux)
star.origin.linkhttps://www.theses.fr/2022BORD0259
dc.contributor.rapporteurVerhoeyen, Els
dc.contributor.rapporteurAmendola, Mario
bordeaux.COinSctx_ver=Z39.88-2004&rft_val_fmt=info:ofi/fmt:kev:mtx:journal&rft.title=Evaluation%20du%20risque%20d%E2%80%99instabilit%C3%A9%20g%C3%A9nomique%20induite%20par%20CRISPR-Cas9%20et%20optimisation%20du%20syst%C3%A8me%20pour%20une%20%C3%A9dition%2&rft.atitle=Evaluation%20du%20risque%20d%E2%80%99instabilit%C3%A9%20g%C3%A9nomique%20induite%20par%20CRISPR-Cas9%20et%20optimisation%20du%20syst%C3%A8me%20pour%20une%20%C3%A9dition%&rft.au=ROSIER,%20Juliette&rft.genre=unknown


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